提取出的DNA怎样放回细胞体内?
好像是不行的，因为提取过DNA的细胞不会再生长 。首先，严格地说，它不是DNA的降解，而是DNA中断后形成的片段，因为通常DNA很长，在操作过程中很容易被外力破坏形成碎片，这是正常现象，这在提取中是无法避免的，只能尽可能减少，如果降解，将形成分散的条带，条带差异不明显， 操作时注意轻柔。
这时候我们成功采取出基因，但是想要把提取出来的DNA放回细胞的体内这个难度就很大了，毕竟基因实在是太小了，我们要用很高的显微镜才可以看到，想要放回去，真的可能也就是用很高精度的机械搭配强大的人工智能才能做到了，这一点大家可以借鉴一下最新研究的帮助手术的机械人来看。
首先，病毒外壳上的蛋白识别细胞表面的受体，病毒吸附在细胞表面，与细胞膜融合后，病毒将衣壳留在外面，将DNA或者RNA注入到细胞内。之后，在细胞蛋白和病毒自身蛋白的帮助下，整合酶将DNA或者由RNA反转录得到的DNA整合到细胞的染色体上，过程涉及到很多蛋白。
主要方法：【1】导入植物受体细胞：（1）农杆菌转化法。农杆菌是土壤中的一种微生物，在自然条件下感染双子叶植物和裸子植物，对大多数单子叶植物没有感染能力.农杆菌进入植物细胞后，其Ti质粒上的T-DNA会转移到受体细胞染色体的DNA上，是目的基因进入植物细胞。
而蛋白质却存在于细胞质中，像DNA这样的大分子是无法随意进入细胞质的。然而密码总是会被带入细胞质的，这一来，人们不禁要问，是谁把锁在细胞核内的DNA手里的密码带入了细胞质的呢？科学家们从DNA那里拷贝了一份密码文件，并带入了细胞质中。经过试验和观察，发现这个信使就是RNA——核糖核酸。
什么是染色质免疫共沉淀技术(ChIP)?
染色质免疫共沉淀技术是在保持组蛋白和DNA联合的同时，通过运用对应于一个特定组蛋白标记的生物抗体，染色质被切成很小的片断，并沉淀下来的技术。这项技术主要用来分析目标基因有没有活性、或者分析一种已知蛋白（转录因子）的靶基因有哪些。
【答案】： 染色质免疫共沉淀技术（ChromatinImmunoprecipitation，ChIP）也称结合位点分析法，是研究体内蛋白质与DNA相互作用的有力工具，通常用于转录因子结合位点或组蛋白特异性修饰位点的研究。
染色质免疫共沉淀技术（ChIP）是研究蛋白质与DNA在染色质环境下的相互作用的关键途径，揭示真核生物基因表达机制。这一技术在活细胞状态下固定蛋白质-DNA复合物，将其随机切断为一定长度的染色质片段，通过免疫学方法沉淀复合体，实现对特定蛋白结合的DNA片段的富集。
rtpcr需要多少个细胞的rna
朋友你好！如果用293T细胞那么12孔板一个孔的细胞量就够，但293T属于细胞个体小且长得比较密比较多的那种，如果换做HeLa或者更大更稀的其他细胞，那还是6孔板或者35mm小皿更保险。
在进行rtpcr时，对于rna的浓度和纯度要求，通常浓度在20ng/ul以上即可满足实验需求。如果样本来源于组织，其浓度可能会非常高，达到几百甚至几千。然而，对于病毒或少量细胞，所需的浓度会相对较低。为了确保rna的纯度，必须使用仪器进行测量。
rtpcr时提取rna的浓度和纯度要求：浓度20ng/ul以上足够了，如果用的是组织提取，浓度一般很高，可以达到几百甚至几千。如果你用的是病毒、少量细胞，浓度低一些也没有关系。纯度需要用仪器测一下。260/280理论值应该有0以上，260/230值2以上基本合格。
rtpcr操作有5个步骤。具体操作如下：总RNA提取。DEPC处理水溶解RNA，-20℃保存，备反转录之用。反转录。
怎样提取核酸中DNA,RNA
1、提取RNA的方法很多，在工业生产上常用的是稀碱法和浓盐法。前者利用稀碱溶解细胞壁，使RNA释放出来，这种方法提取时间短，但RNA在此条件下不稳定，容易分解；后者在加热的条件下，利用高浓度的盐改变细胞膜的透性，使RNA释放出来，此法易掌握，产品颜色较好。
2、提取方法多样，有手工和自动化两种。煮沸裂解法适用于DNA粗提取，但效果一般。
3、提取原理和方法：细胞裂解释放核酸，核酸沉淀则分离纯化。传统方法如煮沸裂解、磁珠法、酚氯仿抽提等各有特点，适合不同类型的核酸和样本类型。 纯化策略：包括煮沸裂解法、磁珠法、阴离子去污剂法等，每种方法针对特定的DNA或RNA结构和样本特性设计，确保完整性和纯度。
4、常见的核酸提取方法包括手工和自动化提取，以及基于煮沸裂解法、酚氯仿抽提、浓盐法、阴离子去污剂法、Trizol法、CTAB法、离心柱纯化和磁珠法等。
5、核酸是生物体内的遗传物质，包括DNA和RNA。DNA主要存在于细胞核、线粒体和叶绿体，RNA则在细胞质中。提取核酸对生物研究至关重要，直接影响实验结果。提取纯化原则与要求 核酸提取步骤主要包括破碎、溶解、沉淀、洗涤和纯化。需确保提取的核酸纯度高、片段完整，以满足实验需求。
6、dna的提取方法：浓盐法、SDS法、CTAB法等。 浓盐法。根据DNA和RNA在电解溶液中的溶解度不同，可将二者分离。常用1 mol/L NaCl抽提，得到的DNP黏液中加入含有少量辛醇的氯仿一起摇荡，使之乳化，再离心，使蛋白质凝胶停留在水相及氯仿相中间，而DNA则位于上层水相中。